OPTIMALISASI PCR IKAN TONGKOL KRAI (Auxis thazard) DAN LISONG (Auxis rochei) PADA ANALISIS KERAGAMAN GENETIK
Abstract
Ikan tongkol lisong dan krai merupakan salah satu jenis tuna yang berperan nyata untuk usaha perikanan tangkap di Indonesia. Pengelolaan sumberdaya ikan tersebut harus selalu dapat dilakukan untuk menjaga tingkat pemanfaatannya supaya tidak lebih tangkap. Kajian keragaman genetik merupakan salah satu teknik dalam pengelolaan pemanfaatan sumberdaya perikanan dengan cara mengetahui tingkat keragaman genetik pada suatu struktur populasi. Kajian keragaman genetik ini diharapkan dapat menjadi basis kajian stok dan opsi dalam pengelolaan sumberdaya perikanan tongkol agar pemanfaatannya dapat dilakukan secara berkelanjutan. Awal mula analisis keragaman genetik dilakukan dengan memperbanyak DNA secara in vitro menggunakan teknik PCR (Polymerase Chain Reaction). Keberhasilan proses PCR dipengaruhi oleh beberapa faktor seperti suhu dan waktu penempelan oligonukleotida primer. Berdasarkan hal tersebut, penelitian ini bertujuan untuk mengetahui suhu dan waktu optimal pada primer Aro2-38. Sampel penelitian diperoleh dari hasil tangkapan pukat cincin yang didaratkan di PPN Palabuhanratu, Jawa Barat. Optimasi PCR menggunakan 12 suhu dan 2 waktu penempelan yang berbeda yaitu : 520C; 52,80C; 540C; 55,50C; 57,20C; 59,10C; 60,90C; 62,80C; 64,50C; 65,90C; 67,20C dan 680C, dan suhu penempelan 30 dan 15 detik. Hasil analisis menunjukkan bahwa produk PCR optimum (menghasilkan pita alel DNA) pada ikan tongkol krai berhasil waktu penempelan 30 detik dengan rentang suhu 52-540C. Sedangkan pada sampel ikan tongkol lisong, produk PCR yang optimum muncul pada waktu penempelan 15 dan 30 detik, dengan rentang suhu 52-60,90C.
Frigate and bullet tuna constitute one of tuna species that plays a significant role in Indonesian fishing business. Management of fisheries resources must always be done to maintain the level of utilization so that it is not excessive. Genetic study is one of techniques in managing fisheries resource utilization by knowing the level of genetic diversity in a population structure. This genetic diversity study is expected to be the basis and option in the management of tuna fishing resources so that their utilization can be carried out sustainably. Genetic diversity analysis is start by multiplying fish DNA using PCR (Polymerase Chain Reaction) technique. The success of the PCR process is influenced by several factors such as temperature and time of primary oligonucleotide attachment. Based on this, this study aims to determine the optimal temperature and time in primers Aro2-38. The research sample was obtained from the catch of purse seine landed in PPN Palabuhanratu, West Java. PCR optimization uses 12 temperatures and 2 different annealing times: 520C; 52.80C; 54ÚC; 55,50C; 57.20C; 59.10C; 60.90C; 62.80C; 64,50C; 65,90C; 67.20C and 680C, and the annealing times are 30 and 15 seconds. The results of the analysis showed that the optimum PCR product (producing DNA allele bands) on the cretaceous tuna was successfully pasted for 30 seconds with a temperature range of 52-540C. Whereas in the sample of tuna lisong, the optimum PCR product appeared at the time of attachment of 15 and 30 seconds, with a temperature range of 52-60.90C.
Keywords
Full Text:
PDFReferences
Basyuni, M., Rahayu, S., & Jayusman. (2012). Studi pendahuluan keragaman genetik spesies yang rentan johannesteijsmannia altifrons di Hutan Sikundur, Sumatera Utara. FORESTA Indonesian Journal of Forestry. I (1), 7-11. ISSN: 2089-9890
BPS (Badan Pusat Statistik). (2017). Statistik Sumber Daya Laut dan Pesisir 2017 (No. 04320.1702; hlm. 310). Jakarta, Indonesia: Badan Pusat Statistik.
Bucklin, A., Steinke, D., & Blanko-Bercial, L. (2011). DNA barcoding of marine metazoa. Annu. Rev.Mar.Sci. 3, 471-508. DOI: 10.1146/annurev-marine-120308-080950
Catanese, G., Infante, C., Crespo, A., Zuasti, E., Ponce, M., Funes, V., & Manchado, M. (2007). Development and characterization of eight microsatellite markers in bullet tuna (Auxis rochei). Molecular ecology notes, 7(5), 842–844. DOI:10.1111/j.1471-8286.2007.01723.x
Ferguson, M. M., & Danzmann, R. G. (1998). “Role of genetic markers in fisheries and aquaculture: useful tools or stamp collecting?”. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, 55(7), 1553–1563. DOI: 10.1139/f98-096
Gagneux, P., Boesch, C., & Woodruff, D.S. (1997). Microsatellite scoring errors associated with noninvasive genotyping based on nuclear dna amplified from shed hair. Mol Ecol, 6, 861–868. DOI: 10.1111/j.1365-294X.1997.tb00140.x
Garcia, F.J., Canonne, M., Quillet, E., Bonhomme, F., & Chatain, B. (1998). The application of microsatellite markers to breeding programmes in the sea bass, Dicentrarchus labrax. Aquaculture,159,303–316.DOI:10.1016/S0044-8486(97)00188-9
Marwayana, O. N. (2015). Ekstraksi asam dioksiribonukleat (DNA) dari sampel jaringan otot. Oseana,XL(2), 1-9. ISSN:0216-1877
O’Connell, M. & Wright, J. M. (1994). “Microsatellite DNA in fishes,”. Reviews in Fish Biology and Fisheries,7(3),331–363. DOI: 10.1023/A:1018443912945
Park, L. K., & Moran, P. (1994). “Developments in molecular genetic techniques in fisheries”. Reviews in Fish Biology and Fisheries, 4(3), 272–299. DOI: 10.1007/BF00042906
Pertiwi, N. P. D., Mahardika, I. G. N. K., & Watiniasih, N. L. (2015). Optimasi Amplifikasi Dna Menggunakan Metode PCR (Polymerase Chain Reaction) Pada Ikan Karang Anggota Famili Pseudochromidae (Dottyback) Untuk Identifikasi Spesies Secara Molekular. Jurnal Biologi, 19(2), 1-5. DOI: 10.13140/RG.2.2.27883.34083
Sembiring, S. B. M., Haryanti, Suwirya, K., Wardana, I. K., Sutarmat, T., & Yudha H. T. (2016). Penggunaan Penanda Genetik Tumbuh Cepat Untuk Produksi Calon Induk Kerapu Sunu, Plectropomus Leopardus Dalam Program Seleksi. J. Ris. Akuakultur, 7(1), 1-9 DOI: 10.15578/jra.7.1.2012.1-9
Smith, M. H., & Chesser, R.K. (1981). Rationali for Conserving Genetic Variation of Fish gen poll. Ecol. Bull. 23, 119 – 130. DOI: 10.2307/1444712https://www.jstor.org/stable/1444712
Wattier, R., Engel, C.R., Saumitou-Laprade, P., & Valero, M. (1998). Short Allele Dominance as a Source of Heterozygote Deficiency at Microsatellite Loci: Experimental Evidence at the Dinucleotide. Molecular ecology, 7(11), 1569-1573. DOI: 10.1046/j.1365-294x.1998.00477.x
Widodo, A. A., Satria, F., & Sadiyah, L. (2014). Status pemanfaatan dan pengelolaan sumber daya ikan tuna neritik di Samudera Hindia WPP 572 dan 573. J.Kebijak.Perik.Ind. 6(1), 23–28. DOI: 10.15578/jkpi.6.1.2014.23-28
Yuwono, T. (2006). Teori dan Aplikasi Polymerase Chain Reaction, Panduan Eksperimen PCR untuk Memecahkan Masalah Biologi Terkini. Penerbit Andi, Yogyakarta
Zardoya, R., Vollmer, D.M., Craddock, C., Streelman, J. T., Karl, S. & Meyer, A. (1996). “Evolutionary conservation of microsatellite flanking regions and their use in resolving the phylogeny of cichlid fishes (Pisces: Perciformes)”. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences, 263(1376), 1589–1598. DOI: 10.1098/rspb.1996.0233
DOI: http://dx.doi.org/10.15578/bawal.11.2.2019.95-102
Bawal Widya Riset Perikanan Tangkap is licensed under a Creative Commons Attribution-ShareAlike 4.0 International License.
View My Stats
p-ISSN 1907-8226
e-ISSN 2502-6410